ICR小鼠主要用途:已选为某些生物制品检定的法规动物。广阔用于药理、毒理、**、放射性、食品、生物制品等的科研、生产和教学。
中国科学院遗传研究所在1973年从日本国立**研究所引进;1979中国医学科学院分院动物中心引进;1978年北京检定所引进;1983年上海计划生育研究所从瑞士苏黎世毒理学研究所引进。特点:远交系小鼠,毛色白化。适应性强,体格健壮,繁殖力强,生长速度快,实验重复性较好,雌鼠自发性畸胎瘤和管状腺瘤发病率为0%~1%,用氨基甲酸乙酯诱发时,11~16天胚胎期畸胎瘤和管状腺瘤发病率为5.9%,离乳个体管状腺瘤和囊瘤发生率为30%,孕鼠为3%。是国际通用的封闭群小鼠,我国从美国、日本、英国、瑞士等国引进的ICR,各群体之间在遗传特性方面不可避免地出现了一些差异,在应用时应注意。ICR/JCL小鼠是进行免疫药物筛选,复制病理模型较常用的实验动物。外周血象和骨髓细胞,具有较好的稳定性,是良好的血液学实验用动物。 卡文斯实验鼠的繁育记录完整,确保科研可追溯性。安徽生产鼠研究

实验鼠销售模式主要是直销模式,即企业直接面向终端客户,包括高校、医院等科研客户以及创新药企、CRO研发企业等工业客户。具体销售时,上述客户或其所属机构、课题组等直接下单。2021年,中国实验鼠产品和服务市场规模约为35亿元。其中,实验鼠行业发展受到国家基础科学研究经费投入、创新药物开发市场景气程度、基因工程技术迭代水平进步等多重因素影响。近年来,伴随着国家密集出台多项政策,实施医药创新驱动战略,带动了实验鼠产业的发展,市场增长速度较快。河南db/db鼠技术推广卡文斯实验鼠的微生物检测报告确保无特定病原体传染。

腹腔注射腹腔注射虽然简单,也有翻车的危险。一针下去,扎到内脏,呜呼哀哉。先将小鼠腹腔注射操作要点总结如下:抓鼠后选择低尾高位的位置;选择下腹部腹中线进针;小于60度进针有落空感;回抽未见血后推针,旋转半圈拔针。腹腔注射适合刺激性小的水溶性药物的用药,利用腹腔膜及大小网膜血管丰富,吸收面积大等特点,使药物快速入血。
注意事项:1、腹腔注射只宜用等渗药液(如5%葡萄糖液、0.9%生理盐水)适当配无刺激性的药物(如肌苷、维生素B1、维生素C),而且注射量不宜太大,注射药液温度应与体温相近。2、注射时,小鼠头部要呈低位,使内脏向胸部侧偏移,针头不宜过长,以防止刺伤肠道、膀胱或其它内脏身体部位。3、进针时不要犹豫,切勿为避免刺伤身体部位,针头刚插入皮肤就向上挑起,此时针头极有可能还没刺破腹腔壁,只是将液体注射在腹部皮下。
小鼠特性体型小,发育成熟时体重:雄性20~40g,雌性18~40g;面部尖突,长有19根长长的触须,耳耸立呈半圆形、眼大、鼻尖,尾长与体长约相等。尾部表皮覆有小角质鳞片。(大约200片鳞片)毛色因品系品种而异常见有:白色、野灰色、黑色、棕色、黄色、巧克力色和肉桂色等。
近年来,基因工程技术不断实现突破,以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术得到了普遍运用,使实验鼠大规模生产成为可能,快速推动了实验鼠行业发展进程。与发达国家相比,我国实验鼠市场起步较晚,还处于发展早期,随着国内实验鼠企业培育技术逐渐成熟、产品种类愈加丰富,市场国产化率正在提升。 常州卡文斯定期对实验鼠进行健康监测,确保实验数据准确性。

常用动物实验选择
1.名称:KM小鼠
主要用途:广泛应用于药理学、毒理学等领域研究以及药品、生物制品的生产与检定。简介:1926年美国Rockfeller研究所从瑞士引入白化小鼠培育成Swiss小鼠。1944年3月17日由汤飞凡教授从印度Hoffkine研究所引进Swiss小鼠,饲养在昆明国家防疫处。由于该小鼠起初引入地是昆明,故称之为昆明小鼠。解放后国家防疫处迁回北京天坛,更名为卫生部生物制品研究所。1950年小鼠随之引到北京天坛(检定所现址),当时保种9对。1953年10月移至北京东郊,1954年扩种,相继引到其他单位,现已遍布全国各地。特点:远交系小鼠,经50多年的选育,现在KM小鼠zl自发率极低。不同地饲养的昆明小鼠封闭群的生长发育与繁殖性能存在一定差异。但其共同特点是抗病力和适应力很强,繁殖率和成活率高。它在我国生物医学动物实验中约为小鼠总用量的70%。 3xTg-AD小鼠用于研究与突触功能障碍和阿尔兹海默症相关的斑块和神经缠结病理。河南NXG小鼠胚胎
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腹腔注射操作步骤:1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上,提其尾巴中部,水平偏下往后轻拉,小鼠爪子会自然会抓住笼子,此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛,比较好是抓在小鼠的耳朵处,这样可以更好固定小鼠的头部,以防被咬。但是,切记力气不要过大,容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定,这样就可以将小鼠整个躯干固定好,注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置,如果小鼠躯干不能保持竖直,很容易扎到脏器,引起出血,影响实验。2.注射抓取小鼠后,应腹部向上,头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位,避免扎伤。右手持注射器,插入小鼠腹部,注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处,缓慢以45度左右进针,进针深度小于1cm,进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针:为了防止漏液,轻微旋转针头,再缓缓拔出。在实验前,准备酒精棉球,注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用,避免交叉染上。此外,注射前,也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤,可以明显辨别药物是否注射到腹腔,如果看到鼓包,就是注射到皮下了。安徽生产鼠研究
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